载体与目的基因的连接与转化以及重组DNA的提取与酶切鉴定.docx

实验一载体与目的基因的连接与转化以及
重组DNA的提取与酶切鉴定
一、实验目的
1.CaCl2法制备感受态细胞
2.目的基因与载体连接（c-myc+pSV2；粘端连接）
3.重组质粒转化大肠杆菌并筛选转化体（HB101；Ampr）
4.质粒DNA的小量快速制备
5.质粒DNA的限制性内切酶酶切
6.DNA的琼脂糖凝胶电泳
二、实验原理
通过粘端连接法将具有相同粘性末端的DNA分子连接在一起，通过碱基配对氢键形成一个相对稳定的结构，利用连接酶发挥间断修复的功能，从而获得重组的DNA分子。
受体细胞经处理后（电击或CaCl2等处理），细胞膜通透性发生变化，从而使外源的载体分子通过感受态细胞，并使受体细胞获得新的稳定遗传的性状，该过程称为转化。由于本实验种pSV带有抗氨苄青霉素的基因，因而转化后的细胞在含氨苄青霉素的平板上培养可以筛选出转化成功的受体细胞。
分离质粒DNA的步骤包括：培养细菌使质粒扩增、收集和裂解细菌以及分离和纯化质粒DNA。SDS可以使细胞壁裂解，碱变性抽提质粒DNA的原理是利用染色体DNA与质粒DNA的变性复性的差异达到分离目的，当pH＞12.6时，染色体DNA氢键断裂，双螺旋结构解开而变性，质粒DNA由于超螺旋共价闭合环状结构，两条互补链不会完全分离。当采用pH4.8的NaAc高盐缓冲液调节pH至中性时，质粒DNA恢复原有的构型，而染色体DNA则不能复性而缠绕形成网状结构。通过离心可将染色体DNA及大分子RNA、蛋白质等去除。

三、实验器材和试剂
１.器材
恒温摇床、电热恒温培养箱、电热恒温水浴、台式离心机、低温离心机、涡旋振荡器、移液枪及枪头、1.5ml离心管、制冰机、三角推棒、酒精灯、细菌培养管、电泳槽及电泳仪、凝胶成像系统等。。
2.试剂
1）用BamHI和XbaI处理的线状pSV质粒DNA（20ng/ul）
2）用BamHI和XbaI处理的4.8kbc-mycDNA片段（20ng/ul）
3）已连接好c-myc目的片段的pSV重组质粒DNA（5ng/ul）
4）T4DNA连接酶（5U/ul）及10×连接酶缓冲液（Thermo公司）
5）LB培养基以及含琼脂的LB培养基铺制的平板（含抗生素）
6）0.1mol/LCaCl2溶液
7）AxyPrep质粒DNA小量试剂盒（Axygen公司产品）
8）无水乙醇
9）BamHI（10ug/ul）及XbalI（10ug/ul）（NEB公司产品）
10）10×Buffer4（NEB公司产品）
11）1×TAE（0.04mol/LTris-乙酸；0.001mol/LEDTA）
12）γDNAHindIIIMarkers（0.1ug/ul）（Thermo公司）
13）6×凝胶加样缓冲液（0.25%溴酚蓝；40%（w/v）蔗糖水溶液）
14）氨苄青霉素储存液（100mg/ml）
15）CelRed核酸染料（10000×inwater）（Biotium公司产品）
四、实验步骤
1.目的基因c-myc与pSV质粒载体的连接
目的基因片段（4.8kb），25ng/ul4ul
载体DNA（3.5kb），25ng/ul4ul
10×buffer1ul
T4DNA连接酶（5U/ul）0.5ul
ddH2O0.5ul
总体积：10ul
混匀，16℃水浴锅温浴
2.CaCl2法制备感受态细胞
1）取0.1ml大肠杆菌HB101培养物，加至3mlLB培养液中，37℃振摇约2h，细胞长至云雾状。
2）将细胞悬液倒入15ml离心管，冰浴10min。
3）4℃，4000rpm，离心10min。
4）去上清，在纸巾上倒置1min。
5）沉淀重悬于冰预冷的1mlCaCl2（0.1mol/L），混匀。
6）转入1.5ml离心管，冰浴10min。
7）4℃，4000rpm，离心10min。
8）去上清，在纸巾上倒置1min，重悬于120ulCaCl2（0.1mol/L），分装为50ul/管。
3.重组质粒转化感受态细胞
1）5ul连接产物或阳性对照1ul分别加入50ul感受态细胞，冰浴30min。
2）42℃，90sec。
3）立即冰浴1~2min。
4）分别加入LB培养液150ul，37℃振摇45min。
5）分别取200ul实验组和100ul对照组铺板于含Amp的LB平板。
6）37℃温箱培养过夜。
4.重组质粒的提取
1）将细菌培养物全部倒入15ml离心管，4500rpm，5min，去上清，沥干。
2）加入250ulBufferS1，吹打混匀以充分悬浮细胞，转入1.5ml离心管。
3）加入250ulBufferS2，上下颠倒，温和混匀4~6次使菌体裂解。
4）加入350ulBufferS3，上下颠倒，温和混匀6~8次，12000g离心10min。
5）吸取上清至已置于2ml离心管的制备管中，120