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实验一载体与目的基因的连接与转化以及 重组DNA的提取与酶切鉴定 一、实验目的 1法制备感受态细胞 .CaCl2 2.目的基因与载体连接(c-myc+pSV2;粘端连接) 3.重组质粒转化大肠杆菌并筛选转化体(HB101;Ampr) 4.质粒DNA的小量快速制备 5.质粒DNA的限制性内切酶酶切 6.DNA的琼脂糖凝胶电泳 二、实验原理 通过粘端连接法将具有相同粘性末端的DNA分子连接在一起,通过碱基配对 氢键形成一个相对稳定的结构,利用连接酶发挥间断修复的功能,从而获得重组 的DNA分子。 受体细胞经处理后(电击或等处理),细胞膜通透性发生变化,从而使 CaCl2 外源的载体分子通过感受态细胞,并使受体细胞获得新的稳定遗传的性状,该过程 称为转化。由于本实验种pSV带有抗氨苄青霉素的基因,因而转化后的细胞在含 氨苄青霉素的平板上培养可以筛选出转化成功的受体细胞。 分离质粒DNA的步骤包括:培养细菌使质粒扩增、收集和裂解细菌以及分离 和纯化质粒DNA。SDS可以使细胞壁裂解,碱变性抽提质粒DNA的原理是利用 染色体DNA与质粒DNA的变性复性的差异达到分离目的,当pH>12.6时,染色体 DNA氢键断裂,双螺旋结构解开而变性,质粒DNA由于超螺旋共价闭合环状结 构,两条互补链不会完全分离。当采用pH4.8的NaAc高盐缓冲液调节pH至中性 时,质粒DNA恢复原有的构型,而染色体DNA则不能复性而缠绕形成网状结构。 通过离心可将染色体DNA及大分子RNA、蛋白质等去除。 三、实验器材和试剂 1.器材 恒温摇床、电热恒温培养箱、电热恒温水浴、台式离心机、低温离心机、涡旋 振荡器、移液枪及枪头、1.5ml离心管、制冰机、三角推棒、酒精灯、细菌培养管、 电泳槽及电泳仪、凝胶成像系统等。。 2.试剂 1)用BamHI和XbaI处理的线状pSV质粒DNA(20ng/ul) 2)用BamHI和XbaI处理的4.8kbc-mycDNA片段(20ng/ul) 3)已连接好c-myc目的片段的pSV重组质粒DNA(5ng/ul) 4)T4DNA连接酶(5U/ul)及10X连接酶缓冲液(Thermo公司) 5)LB培养基以及含琼脂的LB培养基铺制的平板(含抗生素) 6)0.1mol/LCaCl/溶液 7)AxyPrep质粒DNA小量试剂盒(Axygen公司产品) 8)无水乙醇 9)BamHI(10ug/ul)及XbalI(10ug/ul)(NEB公司产品) 10)10XBuffer4(NEB公司产品) 11)1XTAE(0.04mol/LTris-乙酸;0.001mol/LEDTA) 12)YDNAHindIIIMarkers(0.1ug/ul)(Thermo公司) 13)6X凝胶加样缓冲液(0.25%溴酚蓝;40%(w/v)蔗糖水溶液) 14)氨苄青霉素储存液(100mg/ml) 15)CelRed核酸染料(10000Xinwater)(Biotium公司产品)四、实验步骤 1.目的基因c-myc与pSV质粒载体的连接 目的基因片段(4.8kb),25ng/ul4ul 载体DNA(3.5kb),25ng/ul4ul 10Xbuffer1ul T4DNA连接酶(5U/ul)0.5ul ddH2O0.5ul 总体积:10ul 混匀,16℃水浴锅温浴 2.CaCl法制备感受态细胞 2 1)取0.1ml大肠杆菌HB101培养物,加至3mlLB培养液中,37℃振摇约 2h,细胞长至云雾状。 2)将细胞悬液倒入15ml离心管,冰浴10min。 3)4℃,4000rpm,离心10min。 4)去上清,在纸巾上倒置1min。 5)沉淀重悬于冰预冷的(),混匀。 1mlCaCl20.1mol/L 6)转入1.5ml离心管,冰浴10min。 7)4℃,4000rpm,离心10min。 8)去上清,在纸巾上倒置1min,重悬于120ulCaCl2(0.1mol/L),分装为50 ul/管。 3.重组质粒转化感受态细胞 1)5ul连接产物或阳性对照1ul分别加入50ul感受态细胞,冰浴30min。 2)42℃,90sec。 3)立即冰浴1~2min。 4)分别加入LB培养液150ul,37℃振摇45min。 5)分别取200ul实验组和100ul对照组铺板于含Amp的LB平板。 6)37℃温箱培养过夜。 4.重组质粒的提取 1)将细菌培养物全部倒入15ml离心管,4500rpm,5min,去上清,沥干。 2)加入250ulBufferS1,吹打混匀以充分悬浮细胞,转入1.5ml离心管。 3)加入250ulBufferS2,上下颠倒,温和混匀4~6次