蛋白酶活性的测定方法.doc

蛋白酶活性的测定方法(GB/T23527-2009)
1原理
蛋白酶对酪蛋白、乳清蛋白、谷物蛋白等都有很好的水解作用。磷钨酸和磷钼酸混合试剂，即福林-酚试剂，碱性条件下极不稳定，易被酚类化合物还原而呈蓝色反应（钨兰和钨兰混合物）。由于蛋白质中含有具有酚基的氨基酸（酪氨酸、色氨酸、苯丙氨酸），因此，蛋白质及其水解产物也呈此反应。利用蛋白酶分解酪素（底物）生成含酚基氨基酸的呈色反应，来间接测定蛋白酶的活力。
2仪器和设备
2.1分析天平：精度0.0001g
2.2恒温水浴：精度±0.2℃
2.3计时表
2.4分光光度计
2.5沸水浴器
2.6振荡混合器
2.7pH计:精度0.01pH单位
3试剂和溶液
3.1乳酸缓冲液（pH=3.0）适用于酸性蛋白酶
甲液：称取乳酸（80%-90%）10.6g,加水溶解并定容至1000ml。
乙液：称取乳酸钠（70%）16g,加水溶解并定容至1000ml.
使用溶液：取甲液8ml,加乙液1ml,摇匀，稀释一倍，即成0.05mol/L乳酸缓冲溶液。
3.2磷酸缓冲液的制备（pH=7.5）适用于中性蛋白酶
准确称取磷酸氢二钠（Na2HPO3.12H2O）6.02和磷酸二氢钠（NaH2PO3.2H2O）0.5g,加水定容至1000ml
3.3硼酸缓冲液(pH=10.5)适用于碱性蛋白酶
甲液：称取硼酸钠19.08g,加水溶解并定容至1000ml。
乙液：称取氢氧化钠4.0g,加水溶解并定容至1000ml.
使用溶液：取甲液500ml,加乙液400ml,摇匀，用水稀释至1L。3.40.4mol/L碳酸钠溶液：
准确称取无水碳酸钠42.4g,以蒸馏水溶解定溶至1000ml.
3.50.4mol/L的三氯醋酸液：
准确称取65.4三氯醋酸,以蒸馏水溶解定溶至1000ml
3.60.5mol/L的NaOH：
准确称取2gNaOH溶解并定至100ml
3.710.00mg/ml酪素溶液
称取酪素1.000g,准确至0.001g,用少量的0.5mol/L的氢氧化钠溶液(若为酸性蛋白酶则用浓乳酸2-3滴)润湿,,加入适量的各适宜的缓冲液约80ml,在沸水浴中边加热边搅拌,直至完全溶解,冷却后,转入100ml容量瓶中,用适宜的缓冲液稀释至刻度,此溶液在冰箱内贮存,有效期为三天.
3.8100μg/ml酪氨酸标准溶液
3.8.1准确称取预先于105℃干燥至恒重的L-酪氨酸0.1000g,用1mol/L的盐酸60ml溶解后定容至100ml,即为1.00mg/ml的酪氨酸溶液.
3.8.2吸取1.00mg/ml酪氨酸标准溶液10.00ml,用0.1mol/L盐酸定容至100ml,即得100.0μg/mlL-酪氨酸标准溶液.
3.9酶样的制备
准确称取1.000g固体酶或移取1ml液体酶样，用少量的适宜缓冲液溶解并用玻璃棒捣研,然后将上清液倒入100ml容量瓶,沉渣中再添入少量缓冲液捣研多次,最后全部移入容量瓶,稀释到刻度,用四层纱布过滤。滤液可作为测试酶用.该酶已经稀释100倍。
4分析步骤
4.1标准曲线的绘制
L-酪氨酸标准溶液按下表配制。
试管号012345取100μg/ml酪氨溶液（ml）012345蒸馏水（ml）1098765酪氨酸实际浓度（μg/ml）010203040504.2分别取上述溶液各1.00ml(须做平行试验)，各加0.4mol/L碳酸钠溶液5.00ml。福林试剂使用溶液1.00ml,置于40+0.2℃水浴中显色20min,取出用分光光度计于波长680nm,比色，以不含酪氨酸的0管为空白管调零点，分别测定其吸光度值，以吸光度值为纵坐标，酪氨酸的浓度为横坐标，绘制标准曲线或计算回归方程。计算出当OD为1时的酪氨酸的量（μg），即为吸光常数K值，其K值应在95~100范围内。
4.3样品测定：
4.3.1先将酪素溶液放入40±0.2℃恒温水浴中，预热5min
4.3.2取4支试管，各加入1ml酶液
4.3.3取一支作为空白管，加2ml三氯乙酸，其他3管作为测试管各加入1ml酪素，摇匀，40℃保温10min
4.3.4取出试管，3支测试管中各加入2ml三氯乙酸，空白管中加1ml酪素。
4.3.5静置10min，过滤沉淀
4.3.5各取1ml滤液，分别加0.4mol/L的Na2CO35ml、福林试剂1ml。在40℃显色20min。680nm处测OD值。以空白管调零点。
注：1.398中性蛋白酶制剂和166中性蛋白酸制剂，除反应与显色温度为30℃±0.2℃外，其他操作同上，标准曲线做同样处理。
5.计算
5.1酶活定义：
1g固体酶粉（或1ml液体酶），在40℃（酸性pH=3.0、中性pH=7.5、碱性pH=10.5）条件下，1min水解酪素产生1μg酪氨酸为一个酶活力单位。
5.2计算酶的活性单位依据以下公式