色谱柱的使用及维护.doc

前言液相色谱的分离原理是,在色谱柱流动相中样品的不同组分与固定相发生吸附、分配、离子吸引、排阻、亲和等作用,由于作用力的大小、强弱不同,各种组分在固定相中滞留的时间也不同,因而先后从以固定相中流出而得到分离。因此液相色谱分离的关键之一是色谱柱中的固定相。柱效的好坏直接影响目标化合物的分析和检测。但在液相色谱运行过程中,色谱柱极易发生问题,因此掌握正确使用和维护色谱柱的知识非常必要。色谱柱使用过程中容易发生柱堵塞引起系统压力过高;柱效低引起峰拖尾、变宽;柱污染、损坏导致鬼峰等问题。引起这些问题的内在原因有:(1)硅羟基的死吸附。色谱柱的基材硅胶粒子表面存在硅胶羟基。任何物质在色谱柱中都存在双分配效应,即在流动相与固定相之间进行分配,又在流动相与硅羟基之间进行分配。被分析物质被硅羟基吸附称为非特异性吸附,或称死吸附。当硅羟基对被分析物质的吸附趋近于饱和状态时,色谱柱柱效下降,峰形出现拖尾、变宽。(2)重金属。色谱柱的基材硅胶粒子无论纯度多高,无论怎样处理,都会有不少于5×10-6的重金属以金属氧化物的形式残存在硅胶粒子的表面,这些金属氧化物很容易与其它化合物形成螯合物,使其被氧化,产生不对称峰或拖尾峰。例如儿茶素和大多数中药,因含有多酚结构,极易被金属氧化物氧化,影响其分离效果。(3)碳流失。固定相经长期使用,会有部分碳链被流动相洗脱下来,随流动相一起流出色谱柱外,造成碳流失。(4)缓冲液中盐的析出。在做色谱分析时,有时流动相中会含有缓冲盐溶液。分析结束后,如果没有先用含一定配比的水相流动相冲洗,而直接用纯有机相冲洗,瞬间柱子中的微环境是高有机相、低水相。这时流动相中的缓冲盐溶液极易析出盐,将柱子堵塞,使柱压升高,柱效下降。(5)色谱柱变干。如果对色谱柱保存不当,使色谱柱中的保存液全部挥发,柱子内部变干,造成色谱柱的损伤,影响分离效果。2色谱柱的使用新柱使用前应先检查产品包装、外观是否完好。认真阅读说明书及性能测试报告,了解新柱子的最佳性能指标,如某色谱条件下的柱压、柱效等。有时分析用的流动相与柱子的保存试剂不同,故在分析样品之前,应使用合适的试剂将柱子中的保存试剂清洗出来。要注意清洗用的流动相与保存溶剂的相溶性。反相C18柱通过出厂测试后多保存在乙腈中,可用10～20倍柱体积的甲醇或乙腈来平衡色谱柱。流速要缓慢提高,如开始0.3～0.5mL/min,10～15min后可慢慢加快。硅胶柱和极性色谱柱通过出厂测试后一般保存在正庚烷中。如果分析时需要使用含水的流动相,则使用前须用乙醇或异丙醇冲洗,流速0.1～0.3mL/min,将正庚烷冲洗干净后,再用流动相平衡。实验过程中可以记录色谱柱的一些性能指标,如柱效、柱压等,供今后参考。每次分析样品前,要用流动相对色谱柱进行平衡,待基线平稳后再进样分析。梯度洗脱用初始流动相平衡。一次样品分离完成后,要有足够的时间使系统恢复平衡,再进行下一次分析。一般流动相平衡时间为30min,若系统中有盐或水,平衡时间应延长。3色谱柱的清洗与保存色谱柱清洗是日常的重要维护工作。如果样品分子残留在柱子、接头、流通池中,会污染系统,影响对其它样品的分析,降低柱效。因此分析工作结束后,要用适当的溶剂清洗系统中残留的样品。在反相系统中,若流动相中无酸、碱、盐类物质,可用90%甲醇冲洗30～60min,若含酸、碱、盐类物质,则要先用10%甲醇或乙腈,或用与分析用流动相相同的比例把含酸、碱、盐溶液换成水,冲洗30～60min,再用50～70%甲醇或乙腈冲洗,最后用100%甲醇或乙腈冲洗。若有四元泵,可用梯度达到90%的甲醇冲洗。直接用纯甲醇或乙腈冲洗,会导致磷酸盐沉淀于柱子或检测池中。最好也不要用100%纯水冲洗柱子。纯水极性很强,ODS填料的硅烷键是非极性的,在纯水中各键合基团会因疏水而改变性能,使柱效很快降低。目前已有公司推出可以使用100%纯水的柱子,原理是键合基团互相之间有排斥力,阻止了键合基团性能的改变。能否用纯水冲洗要看柱子说明书的规定。有机相(如甲醇、乙腈)-水体系流动相能完成大部分析工作,但是有时分析弱酸或弱碱化合物时(如生物碱),为消除拖尾现象,需用离子对试剂。常用的离子对试剂有庚烷磺酸钠和十二烷基磺酸钠,这时常采用pH3～5的缓冲盐体系。离子对色谱分离结束后,柱子应先用有机溶剂-水体系冲洗,再用水冲洗,最后用有机溶剂冲洗。假设流动相是甲醇-0.5%庚烷磺酸钠(pH3.3)(VnV=50n50),应先用50%的甲醇水冲洗,然后用水冲洗,最后用甲醇冲洗。这是因为十二烷基硫酸钠和庚烷磺酸钠都是表面活性剂,可以洗掉脂肪油(如烷烃及其衍生物)。如果先用水冲洗,十二烷基硫酸钠和庚烷磺酸钠会将ODS柱胶表面键合的长链烷烃洗脱下来,造成固定相的损失。如果先用有机相-水体系冲洗柱子,由于表面活性剂在有机相中有一定的溶