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2、基本原理 2.1蛋白质的等电点 蛋白质属于一种两性电解质.在不同的pH环境中所带的正负电荷不同。若在某特定的pH环境中其净电荷为零,此时的pH为该蛋白质的等电点。在电场下不泳动。2.2.等电聚焦 在常规电泳中,通常只是在恒定的缓冲液中进行分离,假定有A,B两个蛋白质组分,分别带有净电荷-3和+1。在一个pH9的缓冲洗脱中,带负电荷的蛋白质均放在靠阴极一侧电泳,此时带负电荷多的A蛋白质受阳极影响大,泳动速度比B快,最终会超过B,这样二者就会得到分离。 在等电聚焦电泳中,分离是在连续的pH梯度中进行的。如果把A,B二者的混合物放在一个pH3.5-10的pH梯度中的pH6的位置,则A蛋白质的净电荷为-2,减少两个净电荷;B蛋白质的净电荷为+2,多了两个净电荷。在相同的电场下,A移向阳极,B移向阴极,当它们达到净电荷为零时停止迁移,这种行为称为聚焦反应。蛋白质在等电聚焦电泳中的分离仅仅决定于其等电点,这是一个”稳态”过程,一旦达到等电点的位置,蛋白质就会停止迁移。达到稳态后,如果它要正极或负极任何一侧扩散,均会受到相应的pH制约,即若向负极扩散带负电,会受到阳极的影响,迫使其扩散后退回原位;若向正极扩散带正负电,会受到阴极的影响,迫使其扩散后退回原位。因此,蛋白质能在等电点位置被聚焦成一条稳定的窄带。2.3.两性电解质 (1)Ampholine(瑞典LKB) 它是由许多脂肪族的多氨基,多羧基的异构体和同系物组成的,pH范围2.5-4.5,4-6.5,5-8,3.5-9.5.(2)Servalyte(德国Serva公司) 它是在由丙烯基乙胺与乙烯基亚胺缩合并蒸馏得到的多胺混合物中,再引入磺酸基团或磷酸基团合成的.pH范围:2-4,3-5、4-6、5-7、6-8、7-9、9-11、2-11、3-10.(3)Pharmalyte(瑞典Pharmacia) 七氨基多羧基组成的 pH范围:2.5-5,4-5.5,5-8,8-10,3-10等(4)载体两性电解质(军事医学科学院) 合成的方式与Ampholine基本相同.pH范围:3-9.5,3.5-5.5,4.0-6.0,5.0-7.0,6.0-9.0,7.0-10.03pH梯度的形成 3.1在电场下载体两性电解质的变化 在没有电场时,载体两性电解质溶液的pH值大约是该溶液pH范围的平均值(如pH3-10的载体两性电解质溶液,其pH约为6.5左右)。所以载体两性电解质分子都带有电荷,只是在溶液中的正电荷和负电荷数目相等,净电荷为零.引入电场时,载体两性电解质分子分别向阴极和阳极移动,最终在分子净电荷为零的位置停止迁移.(1)靠近阳极端的载体两性电解质,电负性最强,具有较强的缓冲氢离子的能力,使环境的pH等于载体两性电解质的pI,一直向阴极顺延; (2)靠近阴极端的载体两性电解质,电正性最强,具有较强的缓冲氢氧根离子的能力,使环境的pH等于载体两性电解质的pI,一直向阳极顺延。如图3.2pH梯度的形成过程 pH梯度形成的时间,视正负电极之间的距离和凝胶的厚度而定.一般一块长12cm的玻璃,电极间的有效距离为10cm,凝胶的厚度为1mm,使用Ampholine为载体两性电解质,电泳1小时后pH梯度基本形成,2小时后无多大变化,如图4、实验流程 等电聚焦凝胶溶液配制 ↓ 安装电泳槽、调水平 ↓ 铺胶 ↓ 加样 ↓ 电泳 ↓ 停止电泳 ↓ 取胶固定 ↓ 染色、脱色二、实验方法 1、仪器准备及清洗 (1)电泳槽,玻璃板三块,塑料模板 (2)烧杯50ml一个 (3)量筒100ml一个 10ml一个 (4)大培养皿一个2、配试剂(每组用量) (1)固定液100ml 三氯乙酸10g 磺基水杨酸3.5g 95%乙醇35ml 加蒸馏水至100ml (2)脱色液100ml 95%乙醇10ml 冰醋酸7.5ml 加蒸馏水至100ml3、实验步骤 (1)安装电泳槽,调水平(先平放两块相同厚度玻璃板,上放塑料模板,一头用铁夹夹住)(2)配凝胶溶液 单体2ml Ampholine0.5ml ddH2O5.5ml TEMED8μl 10%AP50μl(3)灌胶,聚胶60分钟 (4)取下玻璃板,电泳槽上加少许液体石蜡,将坐标纸浸透铺平整,坐标纸上放带胶玻璃板 (5)加电极条:取4张滤纸条,其中两张滤纸条浸透1mol/L磷酸,另两张浸透1mol/LNaOH,多余的液滴用滤纸质吸去,然后对称放在凝胶的两侧.(6)剪取加样纸: 按坐标纸的尺寸,剪成0.5x0.5cm大小的加样纸,拨去上下覆盖的保护纸,取出8层擦镜纸作为加样纸,根据样液浓度调节加样纸的层数(标准样4层,其它样液均为8层). (7)加样: 将加样纸分别吸取样液,成一字形排放在两电极之间的凝胶中央. (8)连接电极: 将电极线的插头插入电极板的插孔内,盖上电极板,使铂金