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分子生物学实验实验课考试一、加样器的使用及注意事项 1、用途 2、如何使用?练习:加样器读数为100,实际体积各为多少?2.3加样器使用步骤(示教及学生练习): 1)选择加样器,观察读数,调节读数,吸头的安装要紧密。 不要用手直接拿吸头,安上吸头后一定要再固定一下。 2)吸取液体前,先打到第一挡。 3)将吸头插入液面下适当深度, 过深可能会腐蚀加样器,过浅可能会吸入空气。 4)缓慢松开拇指,吸取液体。松开过快,液体上冲会腐蚀加样器;完全放开拇指后,停留约半秒钟,急于离开液面,容易吸入空气。 5)抬起加样器,估计体积是否正确,将外壁液体用容器口引流回去 6)(吸头内有液体时,不能将加样器倒置或平放,以防液体倒流损坏加样器!),贴容器内壁,将液体匀速打出,加样器推到第二挡。 观察吸头内液体是否完全打出并立即弃于废物盒内.1、打开电源 2、离心管中的液体为2/3,盖紧盖子,防止离心机被腐蚀。4)加0.4ml生理盐水,悬浮细胞。 5)9000rpm,离心3分钟(统一离心),弃上清,弹匀。乙醇沉淀1、STMT溶液:四种成份的英文缩写 S:Sugar8% T:TritonX-1001% M:MgCl20.5mM T:Tris-HCl10mM(PH:8.0) 作用: 用Triton细胞膜上打孔,裂解细胞。 从末梢血中提取DNA主要是从白细胞中提取。 (而红细胞经过溶血处理后都已经裂解)。作用:a.阴离子型去污剂,溶解细胞膜、核膜上脂质成分 b.使蛋白质变性 c.将细胞膜、核膜破坏;对核酸酶有抑制作用重蒸酚:酚的作用是变性蛋白质,而对DNA结构没有影响。 无色 酚的氧化产物(如醌等,粉红色)破坏磷酸二脂键。 重蒸酚是将酚中的酚的氧化产物去除。 TE溶液:Tris-HCl10mM(pH:8.0) EDTA.Na21mM(pH:8.0) 作用:提供略碱的pH值,保证DNA溶于水相。 在酸性条件下,DNA分配于有机相。 8-羟基喹啉:0.1% 黄色酚相指示剂 抗氧化剂氯仿作用: a.氯仿的变性作用不如酚好, 但与酚共同/交替使用可增强去蛋白效果; b.氯仿有加速有机相和水相的分离、 去除植物色素和蔗糖、抑制核酸酶活性;课间休息1、加入550ul(等体积)TE饱和酚,混匀1min.10,000rpm,2min。 (注意抽取下层酚相;酚可腐蚀加样器等,加样器头用过即弃掉) (轻柔混匀,避免DNA链断裂;但是太轻又起不到变性蛋白的作用) 2、将上层水相移至一新管中(要尽量抽尽,又不可吸起酚相)。 加入500ul(等体积)酚/氯仿(已经配好,体积比1:1), 同上条件混匀、离心。 3、将上层水相移至一新管中。 加入500ul(等体积)氯仿-异戊醇,同上条件离心、取上清。 4、加入1/10体积(约30ul)醋酸钠于上清中充分混匀。 加入2-2.5倍体积无水乙醇(约1ml)(通常加满小离心管), 混匀后交给老师,(统一置)-20℃1h(或-70℃10min)。注意事项: 1)本实验将用到的TE饱和重蒸苯酚、氯仿/异戊醇是有机试剂,比水的比重大,而DNA溶解在水里,我们总是取上清; 2)在抽取完苯酚、氯仿等有机试剂尤其不能将加样器平放或倒置,以防液体导流损坏加样器,加完样后立即弃掉加样器头。 3)基因组DNA由于太大,非常容易受机械剪切而断裂,因此,为了得到完整的基因组DNA,尽量不要多次进行物理性操作,如用加样器反复吹打等,有时需要将加样器头尖剪断,以防由于太细造成基因组DNA通过狭小通道而断裂。注意事项:双蒸水溶解沉淀要充分。9、基因组DNA的酶切: 基因组DNA8ul 10xBufferH1ul EcoRI(最后加入)0.6ul 置37℃保温45min。课间介绍(2):1.酶切相关知识1.Southernblot DNA水平基因结构分析的重要策略之一. 基因组DNA酶切电泳后可以直接用于Southernblot转膜。 2.构建基因组文库 3.PCR的模板 克隆表达基因 分析基因一级结构的变化 基因组PCR产物的酶切电泳可以分析基因多态性; 利用内参法可以相对定量分析特定基因在基因组上的拷贝数。DNA琼脂糖凝胶电泳实验第四部分、 DNA质量检测---琼脂糖电泳二、常用试剂1%琼脂糖凝胶电泳。 在样品中加2~3ul6×上样液,混匀, 加入上样孔内. 电泳条件:100~110伏,30-40分钟。 电泳结束后照像保存,结果分析。线性DNA片断大小(kb)琼脂糖浓度(%) 5–600.4 0.8–100.7 0.4–61.0 0.2–41.5 0.2–31.75 0.1–32.0五、电泳仪的使用方法用内切酶酶切基因组,电泳结果可出现连续的、弥漫云雾状带,称Smear带。 识别6bp序列的内切酶,平均每4096bp长度出现一次切割概率。123