预览加载中,请您耐心等待几秒...
1/3
2/3
3/3

在线预览结束,喜欢就下载吧,查找使用更方便

如果您无法下载资料,请参考说明:

1、部分资料下载需要金币,请确保您的账户上有足够的金币

2、已购买过的文档,再次下载不重复扣费

3、资料包下载后请先用软件解压,在使用对应软件打开

东农冬麦1号响应低温胁迫的比较蛋白质组学研究的开题报告 开题报告 论文题目:东农冬麦1号响应低温胁迫的比较蛋白质组学研究 一、研究背景和意义 冬小麦是我国主要的冬季粮食作物之一,其在低温环境下的生长和发育常易受到轻度或重度的胁迫,导致产量和质量差异。为了培育抗寒性强、产量高的品种,在研究冬小麦的低温逆境机制方面具有重要意义。 蛋白质组学是对生物组织或细胞内蛋白质组成结构和表达水平的全面研究,可以全面、系统、高通量地揭示生物体内的生化代谢和分子机制,为生物体的功能解析提供重要数据来源。目前,许多研究都表明,低温胁迫会引起植物内源性蛋白质表达的差异,并且这些表达差异在植物的抗寒性过程中具有重要的作用。因此,采用蛋白质组学技术研究低温逆境对冬小麦蛋白质表达的影响及其机制,具有重要的理论和实践意义。 二、研究思路和方法 1.研究思路 本研究旨在针对东农冬麦1号在低温环境下的抗寒性进行研究,通过利用比较蛋白质组学技术分析冬小麦在低温胁迫下的蛋白质组成差异,寻找与其抗寒表现相关的蛋白质。为了达到研究目的,本研究将从以下三个方面出发: (1)建立低温逆境下冬小麦1号体内蛋白质质谱图谱库,并利用定量技术分析低温胁迫对蛋白质表达的影响程度及其机制。 (2)对比分析正常与低温逆境下冬小麦1号蛋白质组之间的差异,挖掘出低温逆境应答相关的蛋白质。 (3)基于差异分析得到的潜在关键蛋白质,进一步分析并揭示其在低温逆境中的生物学、生化及分子调控关系。 2.研究方法 (1)样本采集:选择东农冬麦1号作为实验对象,在正常生长条件下和低温逆境环境下取样,进行蛋白质样品制备。所有样品通过westernblot鉴定,以保证取得的蛋白质均为合适的样品。 (2)2D-GEL分离:采用浸泡蛋白质电泳(IEF)和SDS-PAGE的二维电泳技术进行蛋白质组分的分离,并通过染色的方法确定不同样品表达的差异蛋白质点的位置。 (3)蛋白质质谱鉴定:将在2D-GEL上显示的蛋白质点进行分离、酶解、质谱分析,并利用质谱图谱库进行数据鉴定。 (4)蛋白质差异分析:利用蛋白质质谱技术鉴定低温逆境下与正常条件下在蛋白质组成上的差异,并进行统计学分析,筛选出显著差异表达的蛋白质。 (5)功能分析:对筛选出的差异表达蛋白质进行功能分类与生物信息学分析,寻找这些蛋白质在低温逆境响应中的潜在调节作用。 三、研究预期结果 (1)建立东农冬麦1号体内蛋白质二维电泳图谱库,并通过定量技术分析低温胁迫对蛋白质表达的影响程度及其机制。 (2)通过比较分析正常与低温逆境下冬小麦1号蛋白质组之间的差异,预测可能与低温逆境应答相关的蛋白质。 (3)基于蛋白质差异分析的结果,揭示关键蛋白质与冬小麦1号在低温逆境中的生物学、生化及分子调控关系,为分子调控相应的抗寒基因和冬小麦抗寒性研究提供理论依据。 四、参考文献 [1]Ren,J.,Chen,X.,Zheng,J.,Han,Y.,Liu,H.,Qin,L.,…&Wei,G.(2018).DifferentialexpressionofthewheatphospholipaseDgeneTaPLDβ1underlow-temperaturestressanditsfunctionincoldtolerance.Journalofagriculturalandfoodchemistry,66(16),4190-4200. [2]Han,C.,Jin,Y.,Xu,R.,Li,C.,Shi,J.,&Yang,L.(2017).AwheatstilbenesynthaseTaSTS1positivelyregulatesdroughtandsaltstressresponsesintransgenicArabidopsisplants.PlantPhysiologyandBiochemistry,120,36-48. [3]Ma,D.Q.,Sun,D.F.,Wang,C.,Zhou,Y.H.,Li,Y.M.,&Yuan,H.X.(2016).Proteomicanalysisofsalt-responsiveproteinsintheleavesofmangroveKandeliacandelduringshort-termstress.PloSone,11(12),e0168263. [4]Yin,K.,Ma,Q.,Zhang,K.,Li,Y.,Du,W.,Yu,L.,…&Qin,H.(2020).Acombinedmetabolomicandtranscriptomicanalysisrevealsmechanismsofmethyljasmonate‐inducedterpenoidbiosynthesisinTripterygiumwilfordii.Journalo