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中国生物工程杂志ChinaBiotechnology,2014,34(8):29-34 DOI:10.13523/j.cb.20140805 单核细胞增生李斯特菌中CcpA缺失株的 构建及对毒力的影响* 江黎涵程小龙瞿慧萍黄逸怡王淑佳罗勤** (华中师范大学生命科学学院武汉430079) 摘要CcpA是革兰氏阳性菌中由ccpA基因编码的介导碳分解代谢物阻遏的全局调控因子。近 年来的研究表明,CcpA不仅参与CCR效应,还直接或间接参与病原细菌毒力基因的表达调控。 为探讨CcpA对单核细胞增生李斯特菌(Lm)毒力的影响,应用同源重组方法构建CcpA缺失菌 株。以BLAB/c小鼠为实验动物模型,检测野生株EGDe和缺失株EGDeΔccpA侵染小鼠后的半数 致死剂量和肝脾细菌载菌量,观察小鼠肝脏和脾脏的病理形态变化结果显示:缺失 LD50。CcpA 后,的降低了倍,虽然肝脾细菌载菌量没有显著变化,但对小鼠肝和脾的 LmLD5010EGDe△ccpA 损害更为严重,表明CcpA缺失增强了细菌的毒力,CcpA对Lm毒力基因的表达可能具有间接或 者直接的调控作用。 关键词单核细胞增生李斯特菌毒力半数致死剂量病理形态 CcpALD50 中图分类号Q789 碳分解代谢物阻遏(carboncataboliterepression,或饲料,可引起人和动物的李斯特菌病,造成败血症、 CCR)是指在混合碳源发酵时,微生物优先利用速效碳脑膜炎、流产和单核细胞增多等多种病症,死亡率高达 源葡萄糖,其分解代谢物对许多基因的表达产生阻遏20%~30%,因此,Lm被WHO列为重要的食源性致病 或激活作用,从而影响非速效碳源利用的现象。在低菌之一[9]。 GC含量的革兰氏阳性菌中,ccpA基因编码的分解代谢Behari等[10]在1998年首次成功克隆到Lm中 物控制蛋白CcpA(catabolitecontrolproteinA)是介导CcpA的编码基因,并证明该基因的功能与CCR效应直 [] CCR效应的主要调控因子1-2。研究表明,CcpA具有接相关。同时,他们也指出Lm的CcpA基因序列与其 多效性功能,不仅参与CCR效应,还参与中心碳、氮代它低GC含量的革兰氏阳性菌的CcpA基因序列有很高 谢的调控以及生物被膜的形成等[3]。在一些致病菌如的同源性,暗示Lm中CcpA也可能参与了毒力基因的 猪链球菌(Streptococcussuis)、金黄色葡萄球菌表达调控,但是并没有做相关动物毒性实验来验证其 (Staphylococcusaureus)、艰难梭菌(Clostridium功能。 diFFicile)、产气荚膜梭菌(ClostridiumperFringens)中,本研究运用同源重组方法构建了ccpA基因缺失菌株, CcpA直接或者间接参与了毒性基因的表达调控[4-7]。比较Lm野生株EGDe和ccpA缺失株EGDeΔccpA对小 单核细胞增生李斯特菌(Listeriamonocytogenes,简鼠毒力的差异,初步探索CcpA在Lm中的功能以及在 称Lm,以下同)属于李斯特菌属(Listeria),是一种革兰致病机制中的作用。 氏阳性兼性厌氧杆菌,广泛存在于土壤、河流、淤泥、粪 1材料与方法 便、动物饲料等环境中[8];通过食用被Lm污染的食品 1.1材料 收稿日期:2014-06-18修回日期:2014-06-29 *国家自然科学基金资助项目(30970111)1.1.1菌株和质粒单核细胞增生李斯特菌野生菌 **通讯作者,电子信箱:qinluo@mail.ccnu.edu.cnEGDe(血清型1/2a,ATCC35152,EGD的衍生株)和质 30中国生物工程杂志ChinaBiotechnologyVol.34No.82014 粒pLSV101均为德国维尔茨堡大学微生物系Werner自美国BD公司。 Goebel教授馈赠;DH5α和pUC18为本实验室保存;T1.1.3实验动物8周龄的健康雄性BALB/c小鼠由 载体(pMDTM18-TVector)购自宝生物工程有限公司。湖北省疾病预防中心提供。 1.1.2主要试剂PCRmix购自北京康为世纪生物科1.1.4引物表1为本实验中所用引物,由上海赛 技有限公司,T4连接酶、Xbal、PstI等酶购自宝生物工百盛生物工程有限公司合成。根据NCBI中EGDe基 程有限公司,细菌基因组DNA提取试剂盒购自天根生因序列设计引物,在引物的5'端有酶切位点和保护 化科技有限公司。BHI培养基(BrainHeartInfusion)购碱基。 表1实验中用到的PCR引物 Table1PCRprimersusedinthisstudy PrimerSequence(5'→3') P1ccpA-Eco