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1.进行酶切 用VspⅠ对四种鱼(GC、GS、NL和ZZ)基因组DNA(需基因组DNA浓度较高)进行酶切。 反应体系为:ddH2O15µL VspⅠbuffer2µL VspⅠ酶1µL DNA2µL 总体积20µL 酶切在37℃反应3~4h即可,但是为了提高酶切效率可切4~6h。 PCR反应程序为:94℃5min,(94℃1min,53℃1min,72℃1min)×30,72℃10min,4℃hold。 VspⅠ酶即(AseⅠ酶):酶切识别位点为:5’AT↓TAAT3’ 5’TAAT↑TA3’ AseⅠ酶的接头为: A1:5’CTCGTAGACTGCGTACC3’ A2:5’TAGGTACGCAGTC3’ AseⅠ酶用的预扩增产物为: A3:5’CTCGTAGACTGCGTACCTAAT3’ 2.接头制备 用10µLA1(200µM)和10µLA2(200µM)混合,94℃3min后室温放置30min。 3.酶切片段与接头连接 接头为A1和A2制备的接头,命名为AE。连接反应体系如下: ddH2O5µL T4ligation酶0.5µL T4buffer4µL 酶切产物20µL ATP(10mM)0.3µL AE1µL 总体积30.8µL 上述混合体系在16℃连接过夜。10h左右。 4.连接产物PCR扩增 对连接产物进行PCR扩增,每个样本做4管。扩增引物为A3。反应体系如下: ddH2O14µL 10×buffer2.5µL Mg2+2µL dNTPs(10mM)0.5µL A31µL DNA(连接产物)5µL TaqE(2.5U/µL)0.2µL 总体积25.2µL PCR反应程序为:(94℃30sec,56℃1min,72℃1min)×20,72℃10min,4℃hold。 5.检测扩增产物 扩增产物大小应在750bp左右,即400~1000bp较好。 6.回收扩增产物 将同一样本的扩增产物收集于一个EP管中 ↓ 向其中加入1/10总体积预冷的3MNaAC和2倍体积预冷的无水乙醇 (或者等体积预冷的4MNH4AC和2倍体积预冷的异丙醇) ↓ -20℃放置30min(该步可在-20℃长期保存) ↓ 室温,12000rpm离心10min ↓ 弃上清,加入1ml左右70%乙醇洗涤一次 ↓ 室温,12000rpm离心5min ↓ 弃上清,干燥后加入20µLddH2O溶解即可(可以根据沉淀量加入ddH2O) 7.配杂交体系 取250~500ng回收DNA与50~80pmolbio-SSR探针混合,使SSC和SDS终浓度分别为4.2×SSC和0.07%SDS。具体杂交体系如下: ddH2O74.5µL 20×SCC21µL 10%SDS0.7µL 回收产物3µL bio-SSR探针(AC)150.8µL 总体积100µL PCR反应程序为:95℃5min,在58℃可以保存,但是不能时间长。在此过程中可以准备磁珠。 bio-SSR探针序列可以为(AC)10、(AC)15、(AC)12或者AG重复均可,这个可以根据基因组序列确定。 8.磁珠准备 1)2mgbeads(200µL)(根据DNA沉淀的多少决定所用磁珠的量,在100~200µL之间,在解冻磁珠时应轻柔的上下颠倒,不能用力)放置在磁力架上,使其吸附到EP管的一侧,然后从另一侧吸弃清液,再加入1mLTEN100洗涤,轻柔颠倒混匀,使磁珠和TEN100充分混合2min左右,然后放到磁力架上吸附,如此反复3次即可。 2)用40µLTEN100溶解最后一次聚集的磁珠。 3)为减少特异性吸附向上述混合液中加入2µL与之无关的基因组DNA(如植物基因组)。 9.吸附 1)将杂交体系与稀释的磁珠混合,再加入200µLTEN100稀释。 2)室温放置30min,期间轻柔混合(不能用力过猛,因为该过程是目的片段与探针吸附)。 10.洗涤(去掉多余DNA和杂质) 将吸附好的磁珠放到磁力架上去除上清。 1)松弛型洗涤:400µLTEN1000洗涤3次,每次5min,加入TEN1000后轻柔混匀。 2)严谨型洗涤:12µL20×SSC+12µL10%SDS+1176µLddH2O,400µL/次,洗涤3次,每次5min,其间需轻柔混匀。(使SSC终浓度为20%,SDS为0.1%)。 11.洗脱 1)第一次洗脱:在磁力架上弃上清液,向磁珠中加入50µLTE,95℃5min后迅速取出将上清液吸入另一个管子中(若温度降低那么则会复性),放入-20℃保存。 2)第二次洗脱:向第一次洗脱后的磁珠中加入12µL0.15MNaOH,洗脱20min后,将其放在磁力架上,取一侧清液,向清液中加入1.8µL1MHCL,再加入36.2µLTE,总共50µL后,放入-20℃保存。 3)洗脱产物回收:分别对两次洗脱后的产物进行