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黄芩苷对小鼠哮喘模型的炎性细胞的影响 试验设计 试验材料: 试验动物:健康BALB/c小鼠60只,雌性,6-8周龄,体重18-22g。小鼠随机分成6组:正常对照组、模型组、地塞米松阳性对照组及黄芩苷高、中、低剂量组。 试验试剂:黄芩苷、卵清蛋白(OVA)、氢氧化铝凝胶、地塞米松、小鼠TL-4、IL-5、.1L-13、IL-17、IFN-γ细胞因子和小鼠抗OVA-IgEELISA试剂盒、脂多糖(LPS)、过碘酸—雪夫反应试剂盒、RT-PCR试剂盒、乙酰甲胆碱等 主要仪器: 试验方法: 建模: ①嗜酸性粒细胞性哮喘模型模型组、阳性对照组及黄芩苷高、中、低剂量组小鼠分别于第1、7、15天腹腔注射OVA溶液0.2mL(含OVA20μg、氢氧化铝1mg),于实验第21天起将小鼠置于密闭容器内,予2%OVA生理盐水雾化激发,1次/天,每次30min,连续7d,以呼吸急促深快、烦躁呛咳及点头运动等症状的出现为激发成功;正常对照组:于第1、7、15天以生理盐水代替OVA溶液给小鼠腹腔注射(0.2mL),第21天起以生理盐水进行雾化激发。其余同前。 ②中性粒细胞性哮喘模型 小鼠致敏:于实验第1天、7天和15天分别致敏,共三次。方法:每只小鼠用1%戊巴比妥钠溶液50mg/kg腹腔内注射麻醉后,使其颈部竖直,用移液器取10μgLPS经鼻逐滴滴入,利用小鼠呼吸将致敏液吸入气道,左右鼻孔交替进行并于腹腔内注入OVA50μg。 小鼠激发:从实验第21天起,将哮喘组小鼠置于自制小鼠雾化吸入箱中,用5%OVA溶液进行雾化吸入激发,每天雾化30min,连续雾化2周 给药方法:自实验第21天起,在OVA溶液雾化攻击前1h给予相应药物。黄芩苷高、中、低剂量组分别灌胃给予黄芩苷90、30、10mg/kg(灌胃容积25ml/kg);阳性对照组小鼠灌胃给予地塞米松1.0mg/kg;正常对照组、模型组小鼠灌胃等容积生理盐水,连续7d(于第28天,即末次激发后24h处死小鼠)。 标本收集: 小鼠血清:末次激发后24h,小鼠经眼球采血。全血37℃静置2h,4℃过夜,3000rpm离心l0min。收集血清样本,用于测定血清中抗OVA特异性IgE表达水平。 肺泡支气管灌洗液:末次激发后24h,将小鼠麻醉腹部向上固定于蛙板,剪开皮肤,剥离气管,用眼科剪将气管剪适中小口,用磨平的15号针头做气管插管,将线绳穿过气管底部,固定气管与针头。将0.5mL37℃生理盐水缓慢注入其中,轻轻按压胸部,然后回收置于离心管中,重复2次,使其回收率达80%。合并3次灌洗液。 BALF中细胞因子测定:将BALF1500rpm离心10min,取上清液测定BALF中IL-4、IL-5、IL-13、IL-17、IFN-γ表达水平。按ELISA试剂盒说明书进行测定。 BALF中炎性细胞总数和分类计数:将BALF离心后细胞泥悬浮于1mLPBS,吸取20μL涂片、干燥、固定,进行瑞士-姬姆萨染色,每板至少200个细胞。根据形态学特征进行分类计数,炎性细胞总数、嗜酸性粒细胞(EOS)、中性粒细胞(NEU)和巨噬细胞。 肺病理组织切片的制作:末次激发后24h,小鼠眼球放血处死,剪小鼠皮肤,剖开胸腔,取出肺脏。将小鼠肺脏浸入10%福尔马林固定,修整组织块,常规石蜡包埋切片,进行HE染色,镜检观察。过碘酸雪夫氏(AB-PAS)染色观察黄芩苷作用后,哮喘模型小鼠肺部病理学变化。 RT-PCR: 引物设计及合成T-bet,上游,5′-GCCAGGGAACCGCTTATATG-3′,下游,5′-GACGATCATCTGGGTCACATTGT-3′,扩增产物136bp;GATA-3,5′-TCTGGAGGAGGAACGCTAATGG-3′,下游,5′-GAACTCTTCGCACACTTGGAGACTC-3′,扩增产物408bp;STAT-6,上游,5′-CACCTTGGAGAGCATCTAT-3′,下游,5′-CTGAATCCTTAACAGAACC-3′,扩增产物361bp;β-actin,上游,5′-ATGTTTGAGACCTTCAACAC-3′,下游,5′-CACGTCACACTTCATGATGG-3′,扩增产物491bp。 趋化因子:Th1:CXCR3、CCR5 Th2:CCR3、CCR4、CCR8 气道阻力、AHR测定:于雾化第1、7、14天釆用Buxco小鼠肺功能仪(FinePointeTMSeriesRCSite)检测小鼠总气道阻力。l%OVA雾化完毕后立即予1%戊巴比妥钠60mg/kg麻醉小鼠,切开皮肤,钝性分离皮下组织、肌肉,充分暴露气管,眼科剪剪开一个小口,取18GBuxco小鼠气管插管置入气管中行有创气管插管术;预热加热板至37℃,连接小鼠肺功能测量仪,将小鼠置于密体描恒温箱加热板上,呼吸机辅助呼吸