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【实验原理】尽管基质液中余下的α-酮戊二酸同样可生成红棕色苯腙硝醌化合物而影响测定结果,但因其量不多,加之对505nm的吸光度远不如丙酮酸生成的苯腙硝醌化合物强,尤其用标准曲线作测定时,所用的酶活性单位通过卡门氏分光光度速率法矫正,摈弃了赖氏法一些固有弊端,结果比其他比色法准确。故卫生部临检中心建议国内无条件使用连续监测法的单位使用赖氏法。1981年全国常规生化检验方法学术讨论会认为赖氏法测定ALT活性较为合理,全国肝炎协作会议也建议统一使用改良赖氏法。ALT活性测定主要有两类方法: 一是卡门氏(Karman)分光光度法,测定的是酶促反应速率。其原理如下: 由于NADH在波长340nm处有特异吸收峰,因此ALT的活性可通过NADH的减少量,亦即通过340nm吸光度的减少量间接作出定量测定。这一方法特异性、准确性高。但是此法除要加入待测酶ALT的底物外,还需要加入指示酶LDH及其辅酶NADH,又需用紫外分光光度计,因此不易为一般临床化验室推广。二是比色测定法,如:金氏法(King法)、穆氏法(Mohun法)和赖氏法(Reitman-Frankel法)。其原理、试剂、操作步骤及作用温度等完全相同。不同之处在于作用时间:King法60min,Mohun法和Reiman法30min。因此它们的单位定义和标准曲线制备也不同。赖氏法没有制定自身的单位定义,而是以实验数据套用速率法的卡门氏单位作表示的。1个卡门氏单位的定义是:在温度25℃,pH7.4,波长340nm,光径1cm的条件下,1ml血清使NADH的吸光度下降0.001的转氨酶活性。可见卡门氏单位不是用物质的量浓度,而是用物质的吸光度表示酶的活性单位的。改原赖氏法的反应温度(40℃改为37℃)和底物浓度(改为低浓度)的改良赖氏法,对卡门氏单位的科学套用,使比色法一些缺陷得到了卓有成效的克服,使其结果与速率法较为一致,能较好反映酶的真实活性。 由于赖氏法设计的底物浓度,如α-酮戊二酸不足,反应速度只能达到最大速度的65%;显色剂2,4-二硝基苯肼的用量只及反应液中酮酸浓度的一半;保温30min的酶促反应后,新生成的丙酮酸和未用完的a-酮戊二酸存在着无法人为控制的竞争显色的几率问题,如此等等,使赖氏法的重现性较差,在测量精度上仍与连续监测法相差甚大。【试剂】 1.0.1mol/L磷酸盐缓冲液(pH7.4):将420mlNa2HPO4溶液和80ml0.1mo1/LNaH2PO4溶液混匀,置冰箱保存。 2.基质溶液(DL-丙氨酸200mmol/L,α—酮戊二酸2mmo1/L):精确称取DL-丙氨酸1.79g和α—酮戊二29.2mg,溶于50ml0.1mo1/L磷酸盐缓冲液中,用1mol/LNaOH溶液(约0.5ml)调至pH至7.4,再加磷酸缓冲液至100ml,最后加入麝香草酚(每L可加0.9g)防腐,置冰箱中保存,可用一个月。 3.2.4—二硝基苯肼溶液(1mmol/L):称取2.4—二硝基苯肼19.8mg,溶100ml/L盐酸中,置室温保存。 4.0.4mol/L氢氧化钠溶液:NaOH16g溶于蒸馏水中调至1000ml。 5.丙酮酸标准液(2mol/L):丙酮酸钠22.0mg,置于100ml容量瓶中,加0.05mol/L硫酸至刻度。 6.0.1mol/LNa2HPO4溶液:称取Na2HPO4·2H2O17.6g溶于少量蒸馏水中,待溶解后加蒸馏水至1000ml,至冰箱中保存。 7.0.1mol/LKH2PO4溶液:称取KH2PO413.6g溶于少量蒸馏水中,待溶解后加蒸馏水至1000ml,至冰箱中保存。 【器材】 恒温水浴锅,723型分光光度计,刻度吸量管,滴管,试管等。【步骤】加入物(ml)1.酶测定中,温度、时间对酶的活力影响很大,故应控制好测定时的温度(要求准确到37±0.5oC),并准确掌握保温时间。 2.丙酮酸的显色受温度影响,故应于季节变化时及底物成份之批号更换时重新制作标准曲线。 3.因为α-酮戊二酸也能与2.4-二硝基苯肼作用生成苯腙而显色,为了减少其对丙酮酸测定的干扰作用,底物中α-酮戊二酸的浓度很低,不能保证酶反应的充分进行;且2.4-二硝基苯肼的浓度也比较低,因此标准曲线不呈直线。 谷丙转氨酶广泛存在于机体组织中,在肝细胞中此酶活性极强,心肌细胞中此酶活性亦很强,故在肝疾患(如肝炎、肝癌等)及心肌受损时,该酶可大量释放入血,使血清谷丙转氨酶活性大大增加。临床上常借此帮助诊断。另外,血细胞中亦含有谷丙转氨酶,若取血时发生溶血,血清谷丙转氨酶也可增高,故应避免溶血。THANKYOU