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一、实验原理 细胞贴壁过程什么时候传代?细胞消化的最佳程度细胞冻存 要求 冻存条件 操作要点 二、实验目的 掌握无菌操作技术。 掌握传代细胞的培养的一般方法与步骤。 掌握培养细胞的消化方法。 了解在倒置相差显微镜下观察培养细胞的形态和生长状况。 三、实验材料及设备 1.细胞 人宫颈癌HeLa细胞 人胃癌BGC-823细胞 2.试剂 胰酶、DMEM培养基、血清、DMSO、抗生素 3.仪器 超净工作台、CO2培养箱、倒置相差显微镜 4.其它用品: 培养瓶,试管,移液管,巴斯德吸管,废液缸,75%酒精棉球,酒精灯 四、实验步骤 1.准备:超净工作台紫外线处理30分钟,用肥皂洗手,穿鞋套,用新洁尔灭溶液拭擦双手消毒。 2.倒置显微镜下观察细胞形态,确定细胞是否需要传代及细胞需要稀释的倍数。将培养用液置室温下预热。 3.关闭超净台紫外灯,打开可见光灯开关,打开抽风机清洁空气,除去臭氧。用75%酒精擦双手消毒。 4.正确摆放超净台内的实验用品:酒精灯、酒精棉球、新洁尔灭纱布、试管架、滴管筒(头)、吸管筒(头)、废液缸等。点燃酒精灯,准备好实验试剂:DMEM培养基(其中血清含量10%)、血清、胰酶等。5.点燃酒精灯;取出无菌试管,巴士德吸管和刻度吸管;安上橡皮头;过酒精灯火焰略烧后插在无菌试管内。 6.将培养用液(90mL)瓶口用75%酒精消毒,过酒精灯火焰后斜置于酒精灯旁的架子上。 7.打开血清(10.5mL)瓶,瓶口过酒精灯火焰后斜置于酒精灯旁的架子上。 8.无菌吸取10mL血清加入到培养液(90mL)中,用微量移液器加入双抗100μL轻轻混匀,配置完全培养基。 9.在血清中(剩余0.5mL)加入4mL完全培养基轻轻混匀,加入0.5mLDMSO(冻存保护剂),轻轻混匀即为冻存液。 10.细胞瓶口靠近火焰打开瓶盖并在酒精灯上烧口消毒,倒掉或吸出培养基(对于小口的培养瓶可采用倾倒方法,对于培养皿,必须用吸管吸出) 11.加一滴管胰酶轻轻漂洗一下细胞,弃胰酶,再加入一滴管或两滴管胰酶(以盖住细胞量为准,转动培养瓶,使其湿润整个细胞层,盖好瓶盖。 12.显微镜下观察细胞的消化状态,待细胞大部分收缩、突起、一半变圆,细胞边界清晰时,即可立起或翻转培养瓶停止消化,在超净台内靠近火焰处弃胰酶13.加两滴管(约1.8-2mL)冻存液既全面吹打细胞瓶壁,吹打均匀,细胞浓度宜大,3×106个/mL左右。 将细胞悬液吸至冻存管中,拧好盖,封好胶布,并标记好细胞种类,冻存时间,保存条件以及冻存者姓名等(悬浮细胞冻存将细胞离心后再加冻存液) 在培养瓶(残余少量细胞)中加入5mL完全培养及,盖好瓶盖(拧紧后并旋回半圈)。做好记录,倒置相差显微镜下观察细胞的形态,放入CO2培养箱培养。 冻存管在4度以下存放30min,转放到-20度1.5-2h,再转到-70度4-12h后即可转移到液氮内,注意做好冻存记录。1.试述传代培养的步骤和注意事项,并指出哪些是关键步骤? 2.细胞胞传代培养的目的是什么? 3.贴壁细胞和悬浮细胞传代方法上有什么不同? 4.如何估计是否传代和传代的方式? 5.细胞冻存应注意的问题。