大鼠坐骨神经切断后外源性bcl-2对脊髓运动神经元的保护.pdf

0(?生理学报!+3&$;.,6/)2)8/3$</(/3$，,9795.(A，())/，AA（0）：0(?M0/0

!!研究论文
大鼠坐骨神经切断后外源性!"#$%对脊髓运动神经元的
保护作用

杨!萍!，应大君，宋!林，孙建森
第三军医大学解剖学教研室，重庆0)))/?

摘!要：!采用大鼠坐骨神经切断损伤模型，行神经外膜端端对线缝合，术中依不同组别，动物于神经缝合处远端
)HA$C处分别注射人的正义和反义I$=*(重组腺病毒（,’J5*I$=*(、,’J85*I$=*(），报道基因重组腺病毒（,’J=8$K）和
生理盐水。术后0?:，1’，+A’和/)’常规灌注固定大鼠，取L0ML@脊髓节段，应用N*78=染色、I$=*(原位杂交和
免疫组化染色、<OPBL染色以及乙酰胆碱酯酶（,2:B）组织化学染色方法，观察到外源基因能在脊髓中表达，同时
外源性,’J5*I$=*(能显著减少L0到L@节段脊髓前角运动神经元凋亡的数目，减少脊髓前角运动神经元中因坐骨神
经切断导致的,2:B活性的降低幅度，并加快其恢复。而,’J85*I$=*(可显著增加坐骨神经切断诱导的脊髓前角运动
神经元凋亡数目以及,2:B活性降低幅度，并延缓其恢复。这些观察结果表明，外源性I$=*(能保护周围神经切断后
引起的脊髓运动神经元损伤。

关键词：I$=*(；周围神经损伤；运动神经元；腺病毒载体
中图分类号：Q0(@；"//?；"/0AHA1

&’()*")+,**--*")(-*.(/*0(12!"#$%(023+04#"(’56()(0*1’(02
-(##(7+0/2"+4)+"0*’,*4.()(68+0)9*’4)

R,PST%67!，RUPSV8*W96，XYPSL%6，XOPW%86*X#6
!"#$%&’"(&)*+($&)’,，-./%01/2/&$%,1"0/3$24(/5"%6/&,，7.)(89/(80)))/?

:!2)’4")：!<:#8%C3Z.:%55.9’E[85.3%6&#5.%78.#.:#-43.#$.%&##ZZ#$.3Z#\37#6395I$=*(365-%68=$34’
C3.36#94365Z3==3[%675$%8.%$6#4&#8\3.3CE;,Z.#4#-%6#94%9C59.94%67，5#65#I$=*(（,’J5*I$=*(），86.%5#65#
I$=*(（,’J85*I$=*(），344#-34.#47#6#=8$K（,’J=8$K）4#$3CI%686.8’#63&%49534PX[85%6]#$.#’%6.3.:#
5$%8.%$6#4&#)HA$C’%5.86.Z43C.:#59.94#’-3%6.4#5-#$.%&#=E%6’%ZZ#4#6.7439-5;<:#48.5[#4#.4865$84’%8=*
=E-#4Z95#’[%.:0^-848Z34C8=’#:E’#36-35.3-#48.%&#0?:，1’，+A’86’/)’4#5-#$.%&#=E86’.:#5-%68=
$34’53ZL0.3L@[#4#:84&#5.#’;N*78=5.8%6%67，I$=*(/(6/&::EI4%’%_8.%3686’%CC963:%5.3$:#C%$8=
5.8%6%67，<OPBL（.#4C%68=’#3\E69$=#3.%’E=.4865Z#485#C#’%8.#’’O<T6%$‘#6’=8I#=%67）5.8%6%6786’
,2:B（8$#.E=$:3=%6#5.#485#）:%5.3$:#C%$8=5.8%6%67[#4#95#’;a#3I5#4&#’.:8..:##\37#6395=8$K7#6#
[85#\-4#55#’%6.:#5-%68=$34’3Z,’J=8$K7439-，86’5#65#I$=*(5%76%Z%$86.=E’#$4#85#’.:#69CI#43Z8-*
3-.3.%$C3.36#9436586’.:#’#$4#85%67’#74##3Z,2:B8$.%&%.E3Z.:#C3.36#94365%6.:#5-%68=$34’%6’9$#’
IE5$%8.%$6#4&#8\3.3CE86’8$$#=#48.#,2:B8$.%&%.E4#$3&#4E;b3[#&#4，86.%5#65#I$=*(%6$4#85#’.:#69C*
I#43Z8-3-.3.%$C3.36#9436586’.:#’#$4#85%67’#74##3Z,2:B8$.%&%.E3Z.:#C3.36#94365%6.:#5-%68=$34’
%6’9$#’IE5$%8.%$6#4&#8\3.3CE86’-43=367#’,2:B8$.%&%.E4#$3&#4E;<:#5#4#59=.