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不同失血量对家兔血压及尿量的影响

一、实验目的

1、学习失血性休克的动物模型的复制方法；
2、观察失血性休克后家兔的一般表现，动脉血压及尿量等生理指标的变化；
3、掌握家兔麻醉、颈动脉及输尿管插管技术；
4、通过输血输液，了解休克的补救原则：需多少，补多少。

二、实验对象

家兔

三、实验器材

哺乳类动物手术器械，兔手术台，铁支架，Medlab生物信号采集处理系统，压
力换能器，记滴器，动脉导管，输尿管导管（或细塑料管），动脉夹，注射器，
刻度烧杯，有色丝线，20%氨基甲酸乙酯溶液，1000μ/ml肝素生理盐水，生理
盐水

四、实验方法与步骤

1、动物麻醉与固定：用20%氨基甲酸乙酯溶液按5ml/kg体重由兔耳缘静脉注射
（或腹腔注射），待动物麻醉后，取仰卧位固定于兔手术台上。
2、备皮：剪去家兔颈部、腹部等手术部位的毛。

3、腹部手术：在耻骨联合上缘沿正中线向上切开皮肤5cm，沿腹白线剪开腹壁
和腹膜，找到膀胱，将膀胱慢慢向下翻转移出体外腹壁上。暴露膀胱三角，在膀
胱底部找出两侧输尿管，并从周围组织中用玻璃分针细心分离一小段输尿管。于
输尿管下方穿两根丝线，将近膀胱端的输尿管用一丝线结扎，另一丝线备用。轻
轻挑起输尿管，用眼科剪在结扎线上方的管壁处剪一小斜切口，将充满生理盐水
的细塑料管向肾脏方向插入，结扎固定。再以同样方法插好另一端输尿管。两侧
的细塑料插管可用Y形管连接，然后连到记滴器测定开始的尿量。记录完毕，用
夹子关闭塑料管口。将膀胱与脏器送回腹腔，用温生理盐水纱布覆盖在腹部创口
上，以保持腹腔内温度。

4、颈部手术：在颈部正中切开家兔皮肤约5—7cm，分离气管、颈总动脉。
（4.1)切开颈部皮肤：钝性分离颈部气管和血管神经鞘。用玻璃分针分离2—
3cm长的两侧颈总动脉，各穿两线，将两线分别拉至动脉两端备用。用玻璃分针
分离2—3cm长的右侧颈外静脉，穿两线，将两线分别拉至静脉两端备用。
(4.2）右侧颈总动脉进行动脉插管：将分离出的右侧颈总动脉远心端用线结扎，
近心端用动脉夹将动脉夹住。在远心端结扎线下方用眼科剪在动脉上作一小“V”
形切口，将动脉插管朝心脏方向插入动脉，用备用线将血管与插管结扎固定，再
将结扎线固定于插管上，防止插管从血管中滑脱。同样方法进行左侧颈总动脉插
管。为避免插管内血液凝固，耳缘静脉注射肝素。
（4.4)左侧颈总动脉进行动脉插管：将压力传感器的下方支管，通过输液管连接
三通管，再连接动脉插管。记录动脉血压正常曲线。

(4.5)打开右侧颈总动脉动脉夹，少量放血于刻度烧杯，使血压降至60mmHg，
待血压稳定后，夹闭右颈总动脉，记录并观察血压变化并记录放血量，并用记滴
器记录每分钟尿滴数或尿量。待血压、呼吸稳定后，再放血，使血压降至40mmHg，
在维持期间的20min内使血压维持在40mmHg至到45mmHg范围内，记录并观察
血压变化，放血总量以及尿量。

5、抢救：将所放出的血液用50ml注射器从右侧颈总动脉缓缓回输。输血后，观
察血压是否恢复正常。然后再输入生理盐水进行抢救，直至血压恢复正常。输血
完毕后观察30min，每10min记录1次各项观察指标变化。
五、观察指标

1、放血前，观察、记录指标：
动物一般情况、动脉血压曲线、尿量
2、放血造成休克

松开右颈总动脉上的动脉夹，，用烧杯收集所放血液。血压降60mmHg，血压
稳定后，夹闭右颈总动脉，记录并观察血压变化并记录放血量，并用记滴器记录
每分钟尿滴数或尿量。待血压、呼吸稳定后，再放血，使血压降至40mmHg，在
维持期间的20min内使血压维持在40mmHg至到45mmHg范围内，记录并观察血
压变化，放血总量以及尿量。
3、抢救：

将所放出的血液用50ml注射器从耳缘静脉缓缓回输，输血完毕后观察30
min，每10min记录1次各项观察指标变化。
六、实验讨论

在实验过程中，由于麻醉药物注射过多，导致兔子死亡，实验无

法进行。以下为在网上查找的相关资料。

1.少量放血时，开始血压下降，尿量减少。颈动脉窦和主动脉弓压力感受器
受到的刺激减少，传入神经冲动减少，使心迷走神经中枢紧张性减弱。心交
感和缩血管中枢紧张性增强，再通过相应的传出神经，结果使心迷走神经传
出冲动减少，心交感神经传出冲动增加，心率加快，心输出量增加，缩血管
神经纤维传出冲动增加，血管收缩，外周阻力升高，因而使动脉血压回升，
这是机体自身的代偿功能,使血压和组织灌流量保持基本正常。代偿机制：1、
交感神经系统兴奋①使大多数器官的阻力血管收缩，在心输出量减少的情况
下，来维持动脉血压接近正常值。调节各器官血流量分布以保持脑和心脏的
供血②容量血管收缩，使回心血量不致下降太多，维持一定的心输出量;③心
率明显加快。2、毛细血管处